Прибор для забора крови из вены. Вакуумные системы для взятия венозной крови

Вакуумная система «ВАКУЭТ» обеспечивает максимальное удобство при взятии крови из вены пациента, соответствует нормативным требованиям ведения преаналитического этапа лабораторных исследований и имеет следующие преимущества:

    значительное уменьшение болевых ощущений при венопункции;

    сокращение времени проведения процедуры до 5-10 сек;

    возможность забора крови в несколько пробирок для различных анализов без повторного введения иглы в вену;

    возможность забора крови у пациентов с труднодоступными венами;

    повышение безопасности медперсонала и пациентов;

    стандартизация условий забора венозной крови;

    простота и надежность маркировки и транспортировки образцов;

    повышение качества образцов сыворотки или плазмы крови;

    уменьшение ошибок на преаналитическом этапе лабораторных исследований.

В настоящее время используется несколько вариантов комплектации системы, в зависимости от состояния вен пациента, вида лабораторных исследования и личного опыта медперсонала.



Пробирки

Вакуумные пробирки «ВАКУЭТ» изготовлены из полимерного материала полиэтилентерфталата (ПЭФ). Изделия из этого пластика отличаются легкостью, прочностью и прозрачностью. Пробирки закрыты безопасными крышками, состоящими из трех частей: резиновой пробки, пластикового корпуса и идентификационного кольца (Рис 5).

Корпус крышки защищает от прикосновений с внутренней поверхностью резиновой пробки, на которой могут быть капли крови после открытия пробирки. В зависимости от назначения пробирки корпус крышки окрашен в различные цвета в соответствии с стандартом ISO 6710. Цвет кольца обозначает наличие разделительных компонентов (желтый - гель, красный - гранулы) или назначения пробирок (белый - для детей, черный - для взрослых).

При выборе пробирок следует учитывать их объем, размеры и необходимый объем забора крови.

Наружный диаметр и длина пробирок должны соответствовать размерам ячеек штативов, роторов центрифуг и штативов автоматических анализаторов, используемых в лаборатории.

Пробирки для получения сыворотки крови

(иммунохимия, биохимия, бактериология, определение групп крови)

а. С активатором свертывания - красная крышка и черное кольцо (педиатрические - белое кольцо). Внутренние стенки пробирки покрыты сухим активатором свертывания (SiO - оксид кремния) для ускорения образования сгустка крови. Время свертывания 20-30 мин. Образцы крови от некоторых групп пациентов могут требовать для формирования сгустка более чем 30 минут (лечение антикоагулянтами, болезни печени, нарушения гемостаза, миелома и др).

б. С активатором свертывания и разделительным олефиновым гелем - красная крышка и желтое кольцо. При центрифугировании гель формирует разделительный слой между сывороткой крови и сгустком.

в. С активатором свертывания и разделительными гранулами - красная крышка и красное кольцо. Гранулы из полистирола образуют разделительное кольцо между сывороткой и сгустком крови при центрифугировании.

Условия центрифугирования:

    только после полного формирования сгустка;

    без разделительных компонентов - 1500 g, 10 мин;

    с гелем или разделительными гранулами - 1800 g, 10 мин на горизонтальном роторе.

Пробирки для получения плазмы крови с эдта

(гематология, иммунохимия, генодиагностика)

а. С ЭДТА (этилендиаминтетрауксусная кислота) - фиолетовая крышка, черное кольцо. На внутренней стенке пробирки нанесена сухая ЭДТА-К2 или микрокапли раствора ЭДТА-К3 в концентрации 1,2-2,0 мг сухого реагента на 1 мл крови. ЭДТА предотвращает свертывание крови путем блокирования ионов кальция. Пробирки могут использоваться в автоматических геманализаторах без открывания крышки.

б. С ЭДТА-К2 и олефиновым гелем - фиолетовая крышка и желтое кольцо. Гель разделяет форменные элементы и сыворотку крови при центрифугировании. Пробирки используются для получения сыворотки при иммунохимическом определении термочувствительных аналитов (АКТГ, инсулин, С-пептид, паратгормон, гомоцистеин и др.)

Условия центрифугирования:

    для термочувствительных аналитов - немедленно после взятия крови в рефрижераторной центрифуге при 4° С

    без геля - 2000 g, 15 мин.

    с гелем - 2200 g, 15 мин

Сегодня практически невозможно представить себе работу медицинской сферы без биохимического тестирования крови, так как проведенные исследования дают намного больше информации врачам, чем жалобы пациентов. После того как человек обратился за помощью в поликлинику или лег в стационар, врач отправляет его на исследования подобного рода.

Объективные и достоверные данные о здоровье больного можно получить не только при помощи применения нового оборудования в качественных медицинских лабораториях. Существенное значение имеет то, насколько правильно провели все манипуляции. Порядок подготовки пациента к забору крови и другого биоматериала имеет ключевое значение в дальнейшей постановке диагноза и назначении правильного лечения. Рассмотрим в данной статье алгоритм забора крови из вены.

Подготовка к исследованию

После беседы с врачом не нужно сломя голову бежать в лабораторию по сдаче анализов. Как правило, в манипуляционном кабинете анализы сразу не возьмут. Необходима предварительная подготовка для того, чтобы забирать кровь из вены, находящейся на периферии. За день до манипуляции следует отказаться от плотного ужина.

Употреблять следует легкую пищу, а поужинать можно не позднее девятнадцати или двадцати часов вечера. Жирная, тяжелая, острая пища может изменить биологические и химические показатели крови, что даст неправильные результаты. Утром, перед исследованием, следует отказаться от завтрака, так как кровь сдают на пустой желудок. Вобщем, ничего сложного. И все же в чем заключается алгоритм забора крови из вены?

Необходимое оборудование

Набор необходимых материалов будет отличаться в зависимости от того, какое оборудование используется. Техническая сторона забора крови и порядок манипуляций при этом оказываются практически одинаковыми. Если используется обычный шприц, необходимы:

  • жгут;
  • ватка или ватный тампон;
  • антисептик (семидесятипроцентный спирт);
  • стерильный шприц одноразового использования;
  • обеззараженный медицинский лоток;
  • салфетка;
  • обязательное наличие медицинской спецодежды;
  • пробирка.

Алгоритм вакуумного забора крови из вены будет представлен ниже. Схема действий исключает использование пробирок и одноразовых шприцев. Манипуляционный кабинет оборудуется креслом для пациента, холодильником и штативами для пробирок.

Основные правила подготовки к операции

Перед введением инъекционной иглы медицинский персонал должен владеть алгоритмом действия забора крови из вены. Первое что нужно сделать, это вымыть руки, что является неукоснительным требованием для соблюдения правил гигиены. Затем следует надеть защитный халат или другую медицинскую одежду. В манипуляционный кабинет входит пациент лишь после того, как персонал готов провести данную процедуру. Следующий этап: регистрация направления на забор крови и идентификация личности пациента. Пациент получает разъяснения о предстоящих действиях и садится в кресло. Медицинский работник, в свою очередь, подготавливает нужное оборудование и начинает процедуру.

Приготовление места проведения венепункции

После полной подготовки оборудования медицинская сестра начинает выполнение манипуляций по забору крови. Зачастую для этих целей используется локтевая вена, так как она находится на поверхности и доступна. Выбирается место для проведения пункции, осматривается и прощупывается сосуд. Жгут накладывается выше места предполагаемого проведения процедуры, так, чтобы исключить передавливание артериальных сосудов. При этом отток крови по венам прекращается. Пациента просят сжать кисть в кулак несколько раз, чтобы увеличить приток крови. Если пациент не может сжимать руку в кулак по ряду причин, к месту забора прикладывают теплую грелку. Тепло способствует расширению сосудов, и приток крови также увеличивается.

После этого обязательно дезинфицируют место взятия крови. Обработку кожи проводят стерильным ватным тампоном дважды и ждут до тех пор, пока полностью не высохнет антисептический раствор. Ниже представлен алгоритм забора крови из вены шприцом. Он описан подробно.

Алгоритм забора крови из вены при помощи одноразового шприца

Для проведения манипуляции готовят необходимое оборудование и открывают стерильный шприц. Упаковку с находящимся внутри шприцем держат в левой руке носиком вниз. Прозрачная сторона упаковки направлена от себя. Правой рукой разрывается бумажный элемент о подвижный поршень шприца. Затем надевается игла для инъекций. Изделие берется за поршень и боковые ушки, и вставляется игла. Такова техника забора крови из вены. Алгоритм довольно прост. Но он требует обязательного соблюдения всех правил.

Далее снимается защитный кожух иглы и выполняется процедура. Когда игла проникает в сосуд, создается ощущение попадания в пустоту. В носик шприца попадает кровь в небольшом количестве. Поршень тянут на себя, при этом в шприц поступает кровь из вены. Процедура продолжается до тех пор, пока крови не будет достаточно для исследования. Затем снимается жгут и вытаскивается из сосуда игла шприца. К месту пункции прикладывается стерильный ватный или марлевый тампон, смоченный антисептиком.

Пациент сгибает в локте руку. Игла выбрасывается в специальный контейнер, а кровь переливается в пробирку по стенке. После переливания всей крови в пробирку, шприц помещается в емкость для дезинфекции. Для выполнения данных манипуляций медперсоналу необходимо оттачивать навыки получения крови из вены в теории и на практике. Алгоритм забора крови из вены на исследование вакуумом тоже довольно прост. В чем же суть?

Алгоритм забора крови из вены вакуумной системой

Технический прогресс в медицинской отрасли не стоит на месте. Получение крови из вены вместо шприца проводят при помощи вакуумной системы. Порядок действий мало чем отличается. Для того чтобы получить кровь с использованием вакуумной системы, подготавливается игла и вставляется в держатель. Предплечье пациента обхватывается левой рукой, на три-пять сантиметров ниже места, в которое будут вводить иглу. Венепункцию делают в том случае, если натянута кожа. Игла вводится под углом в пятнадцать градусов. Алгоритм забора крови из вены вакуумной системой должен быть хорошо отработан. Никаких проблем тогда и не будет.

Если игла попала куда следует, в специальной ее емкости появляется кровь. Пробирка устанавливается в держатель, и вакуумная система забирает кровь из вены.

Пробирку извлекают из держателя после наполнения. Соблюдение правильной очередности заполнения требуется при заборе крови в несколько пробирок. Когда процедура завершена, игла вместе с держателем извлекается. К месту пункции прикладывают стерильный тампон, смоченный антисептическим средством, или наклеивается бактерицидный пластырь.

Все пробирки промаркированы определенным способом, с указанием фамилии и имени пациента, возраста и идентификационного номера, штрих-кода.

В обоих случаях забора крови после поступления ее в пробирку или шприц натяжение жгута ослабляется. Продолжительное пережимание вены приводит к изменениям в составе крови, в особенности - показателя свертываемости. Порядок действий изначально проделывают на тренировочном макете, для того чтобы не допустить ошибки в процессе выполнения на практике. Алгоритм забора крови из вены вакуумной пробиркой может применяться и у взрослых, и у детей.

У малышей

Порядок действий при получении крови из вены у детей такой же, как и у взрослых людей. При проведении манипуляций важно учитывать тот фактор, что дети очень сильно боятся таких процедур. Если проводить забор очень часто, следует отвлекать ребенка следующими способами: показывать любимые, красочные и яркие игрушки или мультимедийные панели. Главное, переключить внимание ребенка, чтобы он не был сосредоточен на происходящем.

Возможные осложнения

Пристальное внимание следует уделить возможным осложнениям после процедуры. Во избежание таких моментов необходимо тщательное соблюдение правил обеззараживания после проведения такого рода процедур, а также четкое выполнение алгоритма забора крови из вены. Неукоснительное соблюдение порядка действий поможет избежать гематом и предотвратит инфекционно-воспалительные процессы в месте укола.

4.2.2. Вакуумные пробирки: виды, цветовая кодировка

Вакуумные пробирки представляют собой основной компонент для взятия венозной крови. Пробирки производятся из стекла или специального материала полиэтилен-терфталата (пластика и стекла), который отличается особой прочностью и препятствует газообмену. Они изготовляются и стерилизуются в заводских условиях, предназначены для одноразового применения. Пробирки выпускаются различных объемов и размеров и уже содержат все реагенты и добавки, необходимые для проведения анализа. Вакуум в пробирках обеспечивает взятие необходимого объёма крови и, соответственно, позволяет гарантировать соблюдение правильного соотношения крови и реагента.

Пробирка состоит из трех основных частей:

    непосредственно пробирка;

    безопасная крышка с идентификационным кольцом;

    этикетка.

Вакуумные пробирки с наполнителем (не реагентом) содержат в себе гель либо гранулы, и используются в случаях, когда требуется разделить составляющие крови. Гель обволакивает сгущенную кровь, обособляя ее от сыворотки, гранулы же превращаются в своеобразный барьер, работая аналогично гелю.

Для некоторых видов анализов добавлен реагент (литий, гепарин, ЭДТА).

Вакуумные пробирки закрываются резиновыми пробками или специальными крышками Hemogard , которые обеспечивают безопасность лаборанта при работе с пробой. Цвет крышки указывает на вид наполнителя и назначение пробирки. Цветовая кодировка пробирок соответствует международному стандарту ISO 6710.

Пробирки для получения сыворотки

Сыворотка крови – наиболее часто используемый материал в клинико-диагностических лабораториях. Для получения сыворотки кровь должна полностью свернуться.

Пробирки для получения сыворотки бывают двух видов – стеклянные и пластиковые. В стеклянных пробирках функцию активатора свертывания выполняет непосредственно само стекло, так как в его состав входит кремний, ускоряющий процесс коагуляции. В пластиковые пробирки для ускорения процесса коагуляции добавляются активаторы свертывания – кремнезем и/или тромбин. Пробирки могут содержать также специальный гель либо гранулы для четкого отделения сыворотки от сгущенной крови.

Стеклянные пробирки без наполнителя и пластиковые пробирки с кремнеземом для исследования сыворотки различают по красной крышке (рис. 5, а ). Пробирки для получения сыворотки с тромбином отличаются окрашенностью крышки или резиновой пробки в оранжевый цвет (рис. 5, б, в ). Тромбин является природным активатором свертывания и значительно сокращает время образования сгустка (3-5 мин.). Пробирки с тромбином применяются для ускоренного получения сыворотки, поэтому чаще всего используются для экспресс-анализов, когда требуется срочно получить сведения о составе крови пациента, к примеру, в реанимационной палате и т.д.

Производятся стеклянные пробирки, в которых содержится только тромбин, и пластиковые пробирки с комплексным наполнителем – тромбин с кремнеземом. Также производятся пробирки с тромбином и гелем, время свертывания крови в которых 3-5 минут.

После заполнения пробирку с тромбином следует обязательно перемешать путем переворачивания 5-6 раз. Полное свертывание крови происходит за 5 минут.

Пробирки с гелем для получения и отделения сыворотки производятся только из пластика, и их можно отличить по желтой крышке (рис. 5, г ). С целью лучшего отделения сгустка крови от сыворотки в пробирки добавлен гель. После взятия пробы пластиковые пробирки следует перемешать путем переворачивания 5–6 раз.

а б в

Рис. 5. Пробирки для получения сыворотки:

а – с активатором свертывания (пластиковые);

б – с тромбином;

в – с тромбином и гелем;

г – с гелем.

Пробирки для исследования плазмы

Для получения плазмы в пробирках используется литиевая или натриевая соль гепарина, распыленная на внутреннюю поверхность пробирки. Гепаринизированную плазму обычно используют для биохимического и иммунологического анализа.

Основное действие гепарина – торможение перехода растворимого фибриногена в нерастворимый фибрин вследствие блокирования активности тромбина.

Пробирки без геля с гепарином (гепарин лития или гепарин натрия) отличаются зеленым цветом крышки. Гепарин лития используется для клинических анализов крови, гепарин натрия – при подборе дозы и мониторинге терапии препаратами лития. Пробирки с гепарином и разделительным гелем для получения плазмы имеют светло-зеленую крышку, в них используется только литиевая соль гепарина. Сразу же после заполнения пробирки и извлечения ее из держателя пробу необходимо тщательно перемешать путем переворачивания 8-10 раз. Центрифугирование следует производить сразу после взятия крови.

Рис. 6. Пробирки для получения плазмы: а – с гепарином; б – с гепарином и гелем.

Пробирки для коагулологических исследований

При взятии образцов для исследования системы гемостаза стандартным антикоагулянтом является цитрат натрия . Его механизм действия основан на связывании ионизированного кальция крови, что ведет к обратимому блокированию процесса коагуляции.

Выпускаются как стеклянные, так и пластиковые пробирки с крышкой голубого цвета (рис. 7). Для предотвращения испарения цитрата натрия пластиковые пробирки изготовляются по особой технологии из разного рода пластика и имеют двойные стенки.

Очень важно соблюдать правильное соотношение крови к антикоагулянту как 9:1. Недостаток цитрата в пробе ведет к образованию микросгустков и коагуляции пробы, а избыток – к искажению результатов за счет связывания кальция из реагентов.

При взятии пробы в несколько пробирок у одного пациента пробирка с цитратом должна заполняться до пробирки с активатором свертывания. Сразу после взятия образца пробирку необходимо аккуратного перемешать 4-5 раз.

Для проведения некоторых коагулологических анализов также могут использоваться пробирки с комплексным наполнителем CTAD (Цитрат натрия/Теофиллин/Аденозин/Дипиридамол).

Рис. 7. Пробирки с цитратом натрия.

Пробирки для гематологических исследований

В качестве антикоагулянта в пробирках для гематологических исследований цельной крови используется ЭДТА (калиевая соль этилендиаминтетрауксусной кислоты). Противосвертывающее действие ЭДТА обеспечивается за счет связывания ионов кальция в крови. В пробирках со светло-лиловой (сиреневой) крышкой антикоагулянт находится в виде раствора или порошка, распыленного на внутреннюю поверхность пробирок (рис. 8).

Для обеспечения правильного соотношения крови и антикоагулянта пробирка с ЭДТА должна заполняться точно до указанного объема. Недостаток ЭДТА в пробе приводит к ее коагуляции, а избыток – к сморщиванию клеток крови и искажению таких клинических показателей, как гематокрит, размер клеток и т.д.

Сразу после взятия крови в пробирку с ЭДТА ее необходимо тщательно перемешать, переворачивая 8-10 раз.

Рис. 8. Пробирки для гематологических исследований цельной крови.

Пробирки для специальных тестов

Пробирки для исследования глюкозы

Для стабилизации глюкозы используются пробирки с серой крышкой и следующими наполнителями: фторид натрия и оксалат калия, йодоацетат и лития гепарин, фторид натрия и ЭДТА.

Пробирки должны заполняться полностью до указанного на них объема. После взятия пробы пробирки следует перемешать, переворачивая 6-8 раз. Поскольку пробирки с фторидом/оксалатом особенно подвержены гемолизу, их необходимо перемешивать с особой осторожностью.

Рис. 9. Пробирки для исследования глюкозы.

Пробирки для исследования микроэлементов

Микроэлементы находятся в крови в крайне малых количествах, поэтому используемые материалы должны исключать возможность загрязнения образца инородными примесями. Это возможно при применении специальных пробирок с крышкой синего цвета (рис.10).

Пробирки предназначены для исследования цинка, железа, меди, кальция, селена в крови; а также токсикологических исследований свинца, кадмия, мышьяка, сурьмы.

Взятие образца и пробоподготовка производятся в соответствии с используемым наполнителем: они могут быть с активатором свертывания, К 2 -ЭДТА или гепарином натрия или без наполнителя. При анализе сыворотки на наличие микроэлементов в следовых количествах не рекомендуется использовать стандартные пробирки с красной крышкой, так как они содержат повышенную концентрацию цинка и других микроэлементов.

При взятии крови у одного пациента сразу в несколько вакуумных пробирок необходимо пробирку для микроэлементов следует заполнять последней для снижения вероятности загрязнения пробы через иглу.

Рис. 10. Пробирки для исследования микроэлементов.

Пробирки для исследования нестабильных гормонов белковой природы

Для сохранения нестабильных ферментов и гормонов белковой природы в пробирках вместе с антикоагулянтом ЭДТА используется ингибитор протеиназы – апротинин. Он применяется для стабилизации таких гормонов и ферментов, как ренин, адренокортикотропный гормон, глюкогон, соматостин, кальци-тонин, остеокальцин, b-эндорфин, секретин, нейротензин, вазоактивный интестинальный пептид. Апротинин содержится в пробирках объемом 5-10 мл с розовой пробкой .

Пробирки для определения группы крови с розовой крышкой

Эти пробирки используются как для определения группы крови, так и для перекрестной пробы при переливании крови. Выпускаются без наполнителя, с кремнеземом (активатор свертывания) или К 2 ЭДТА. Специальная этикетка на пробирке удобна для записи информации о доноре и пациенте.

Рис. 11. Пробирки для определения группы крови.

Пробирки для стабилизации цельной крови (для иммуногематологии)

Пробирки для стабилизации цельной крови содержат комбинированный наполнитель ACD, состоящий из активного антикоагулянта тринатрия цитрата, лимонной кислоты, которая обеспечивает буферный раствор с тринатрия цитратом, и декстрозы, являющейся питательным веществом для эритроцитов. Стеклянные пробирки с ACD можно отличить по светло-желтой крышке , они обычно используются в отделениях иммунной гематологии для анализа поверхностных антигенов лейкоцитов (HLA-типирование, некоторые приложения проточной цитометрии, исследование функций лейкоцитов и специальные иммунологические тесты).

В пробирках наполнитель ACD присутствует в виде раствора (тип А или В). Цельная кровь смешивается с образцом в соотношении 1:6 (1 часть ACD обеих концентрации к 6 частям образца).

Сразу же после заполнения пробирки с ACD пробу необходимо тщательно перемешать путем переворачивания 8-10 раз.

Рис. 12. Стеклянные пробирки с ACD для иммуногематологии.

Пробирки для измерения СОЭ по методу Вестергрена

Система для определения скорости оседания эритроцитов (СОЭ) по методу Вестергрена состоит из вакуумных пробирок для взятия венозной крови и штатива с градуированной шкалой.

Стерильные стеклянные пробирки, закрытые черной крышкой Hemogard , содержат раствор цитрата натрия. При полном заполнении пробирки кровью (5,2 мл) достигается соотношение крови и антикоагулянта, равное 4:1.

Штатив рассчитан на 10 пробирок, каждая ячейка снабжена механизмом, с помощью которого совмещается уровень пробы в пробирке с нулевой отметкой шкалы штатива. Измерение СОЭ проводится в закрытой первичной пробирке, при этом пробу не нужно переливать и дополнительно разбавлять.

Хранить образец до анализа нужно при комнатной температуре, вдали от солнечного света и отопительных приборов. Анализ необходимо провести в течение 6 часов после взятия пробы. Для этого необходимо пробирка помещается в специальный штатив, стоящий на ровной горизонтальной поверхности. В течение всего времени проведения теста штатив должен оставаться неподвижным. Далее совмещают нулевую метку с мениском образца и по истечении 60 минут зафиксируют показатели СОЭ по градуированной шкале штатива между осевшими эритроцитами и плазмой.

Рис. 13. Система BD Seditainer для определения СОЭ по методу Вестергрена.

Пробирки для проведения анализов методами
молекулярной диагностики

Пробирки для получения плазмы и проведения анализов методами молекулярной диагностики

Эти пластиковые стерильные пробирки используются для взятия крови, пробоподготовки, транспортировки и хранения образца неразбавленной плазмы. Пробирки различаются по крышке жемчужно-белого цвета и применяются для определения вирусной нагрузки при ВИЧ-инфекции и вирусных гепатитах, а также для проведения анализов методами молекулярной диагностики (например, ПЦР) и идеально подходят для хранения и транспортировки плазмы.

Рис. 14. Пробирки для отделения плазмы с К2ЭДТА и гелем

(молекулярная диагностика).

Сразу же после заполнения пробирки и извлечения ее из держателя кровь необходимо тщательно перемешать с антикоагулянтом, аккуратно переворачивая 8-10 раз. Образец до центрифугирования следует хранить при комнатной температуре не более 2-х часов, вдали от солнечного света и отопительных приборов.

Плазму в пробирках можно хранить в замороженном виде при
-70°C. В пробирках стабильность РНК ВИЧ и вируса гепатита С сохраняется в течение 72 часов при комнатной температуре.

Пробирки для выделения мононуклеарных клеток крови (моноцитов и лимфоцитов)

Пробирки позволяют отделить мононуклеарные клетки периферической крови в один прием, причем в одной первичной пробирке, внутренние стенки которой покрыты силиконом для минимизации неспецифической активации клеток.

Пробирки выпускаются двух видов:

    с сине-черной пестрой пробкой (пробирки с натрия цитратом);

    с красно-зеленой пестрой пробкой (пробирки натрия гепарином).

    исследования количественных и функциональных характеристик мононуклеарных клеток, исследования их активности,

    обнаружения злокачественных новообразований,

    анализа генетических маркеров,

    исследование провирусной ДНК, РНК вирусов (в т.ч. ВИЧ).

Сразу же после извлечения пробирки с кровью из держателя ее необходимо аккуратно перевернуть 8–10 раз. Образец до центрифугирования следует хранить при комнатной температуре не более 2-х часов, вдали от солнечного света и отопительных приборов.

Компания "ХИММЕДСНАБ" предлагает вакуумные пробирки в широком ассортименте. Эти изделия являются основными компонентами, использующимися для взятия венозной крови. Наличие в них вакуума обеспечивает возможность забора нужного количества материала для анализа, а также точной дозировки реагентов. Эти элементы также могут являться составной частью многокомпонентных систем забора и анализа крови. Благодаря их использованию удается минимизировать ошибки уже на этапе сбора материала для проведения исследования и значительно облегчить работу занимающегося этим персонала.

Существует множество разновидностей вакуумных пробирок. И все из них представлены у нас: возможно осуществить заказ любой по объему оптовой партии. Рассмотрим, как классифицируются такие изделия, какие каждая из разновидностей имеет особенности, и порядок их применения.

Комплектация вакуумных пробирок

В составе этого элемента выделяют следующие части:

    сама пробирка. Она используется для забора, транспортировки и хранения исследуемого материала;

    крышка. Ее функция не ограничивается лишь защитой содержимого от проникновения воздуха и других факторов. При помощи крышек осуществлялся маркировка изделий, за счет чего специалист может определить их назначение и специфику использования (об этом позже). Обычно крышка состоит из резиновой пробки, обеспечивающей плотное закрытие и корпуса из специального пластика. Также на ней может быть еще и цветное кольцо, по которому можно уточнить особенности наполнителя;

    этикетка. На нее наносится вся необходимая для проведения исследований информация.

Что касается материалов, из которых изготавливаются пробирки вакуумные для забора крови, то это может быть стекло, или же пластик. Но для этого подойдет далеко не любой пластик. Как правило, это полиэтилентерфталат - материал, характеризующийся высокой прочностью, а также минимальной пористостью, по сравнению с аналогами, что исключает возникновение газообмена через стенки изделия.

Цвета крышек вакуумных пробирок для взятия крови и их значение

Что касается цветов крышек, которыми комплектуются вакуумные пробирки для взятия крови, то их подбор осуществляется в соответствии с составом реагентов в них, а также от типа исследования, для которого предназначаются эти элементы.

Для маркировки крышек используются следующие цвета:

  • красный. С его помощью маркируется пробирка вакуумная с активатором свертывания крови. С их помощью осуществляется получение сыворотки, представляющей собой субстанцию, освобожденную от факторов свертывания. Благодаря активатору время свертывания крови, взятой на анализ, существенно сокращается и занимает порядка 10-30 минут. Сам же этот состав не оказывает никакого воздействия на результаты исследования, т.к. он устойчив к воздействию ферментов, которые содержаться в крови;
  • зеленый. Этим цветом маркируются пробирки, используемые в процессе проведения анализа плазмы. В этом случае на внутреннюю поверхность наносится антикоагулянт в сухом виде. Благодаря ему предотвращается свертывание плазмы. В качестве антикоагулянта в таких изделиях может использоваться литий-гепарин и натрий-гепарин;
  • желтый. С его помощью обозначаются пробирки с активатором свертывания, а также с разделительным гелем, который размещается на дне. Благодаря ему во время центрифугирования образуется надежный барьер, который разделяет сыворотку для исследования и фибрины с клетками. При использовании таких изделий удается получить значительно больший объем сыворотки, чем с помощью обычных пробирок, что обеспечивается благодаря ее более четкому отделению от остальной массы вещества;
  • серый. Используется для маркировки пробирок, предназначенных для диабетологии. Благодаря применению антикоагулянта (EDTA либо оксалатов) а также стабилизатора глюкозы обеспечивается сохранение образца крови на протяжении долгого времени. При этом его первоначальное состояние не изменяется. Эти изделия подходят для забора крови с целью проведения исследований, касающихся содержания глюкозы в ней;
  • фиолетовый. Это пробирки вакуумные для гематологических исследований с EDTA-K2 или EDTE-K3 (этилендиаминтетраацетат). Благодаря наличию ЭДТА происходит блокирование каскада свертывания крови, а также связывание ионов кальция. Это осуществляется с целью сохранения концентрации во взятой на анализ крови клеточных и внеклеточных компонентов. Эти изделия подходят для анализаторов клеток крови;
  • голубой. Так маркируется пробирка вакуумная с цитратом натрия. Используется она в ходе проведения анализов механизмов коагуляции. Раствор цитрата натрия, содержащийся в таком изделии, в зависимости от принятой в конкретной лаборатории практики, может быть 3,2- или 3,8-процентным;
  • черный. В таких пробирках также содержится буферный раствор цитрата натрия (3,8%). Они используются в ходе проведения исследований по определению скорости оседания эритроцитов.

Объективная оценка состояния пациента, основанная на данных лабораторных исследований, дает более точные результаты, чем субъективные данные, полученные от больного. Результаты лабораторных тестов позволяют не только своевременно поставить точный диагноз, но и оценить качество проводимой терапии. Именно поэтому медицинскому персоналу необходимо обеспечить высокую степень достоверности результатов.

На степень достоверности могут повлиять несколько факторов:

  • предварительная подготовка человека к забору крови;
  • время суток, в которое проводилось взятие материала для лабораторного исследования;
  • инструменты, использовавшиеся для взятия проб и техника получения материала;
  • соблюдение алгоритма взятия проб.

Основная причина появления погрешностей в результатах лабораторных тестов ˗ несоблюдение стандартов преаналитического этапа работы с венозной кровью из-за плохого владения методикой взятия биоматериала с помощью вакуумных систем.

Почему важно использовать вакуумные системы

Лабораторная диагностика проводится в три этапа:

  1. Преаналитичекий.
  2. Аналитический.
  3. Постаналитический.

Продолжительность этапов и степень их влияния на достоверность данных различна.

Самым продолжительным является первый этап, занимающий две трети срока любого исследования. Ошибки, совершенные на преаналитической стадии, приводят не только к увеличению времени, потраченного на постановку диагноза, но и лишней трате средств бюджета из-за назначения повторной процедуры. Они сказываются на всем процессе корректной постановки диагноза и оценки терапии.

Степень достоверности полученных данных зависит от огромного количества переменных:

  • личностных особенностей человека (пола, возраста, расы и т.п.);
  • особенностей пищевого поведения перед сдачей лабораторного материала (голодания, злоупотребления определенным видом пищи и т.п.);
  • интенсивности физических и эмоциональных нагрузок;
  • естественных изменений гормонального фона (фазы менструального цикла, беременности, менопаузы и т.п.);
  • погодных и климатических условий;
  • лекарственных средств, принимаемых человеком;
  • положения пациента в момент взятия материала.

Кроме перечисленного, точность и правильность результатов зависит от техники взятия крови из вены, используемых для этого инструментов, условий транспортировки и хранения набранного материала.

При заборе крови из вены с помощью игл или шприцев невозможно стандартизировать саму технологию взятия материала. Использование игл для взятия венозной крови может привести к попаданию набранного материала и возбудителей гемоконтактных инфекций на руки медперсонала. Это создает опасность дальнейшего переноса возбудителей на других больных. Забор биоматериала шприцем практически исключает такую возможность, но при переносе его из шприца в пробирку возможен гемолиз эритроцитов, вызванный механическим воздействием.

Забор венозной крови шприцем не исключает контакта медперсонала с кровью пациента, потому небезопасен

Таким образом, оптимальным инструментом для взятия венозной крови стали вакуумные системы.

Принцип действия и строение вакуумной системы

Системы с отрицательным давлением состоят из:

  • иглы для внутривенной инъекции;
  • переходника, крепящего иглу на пробирке;
  • пробирки, наполненной консервантом, в которой создано отрицательное давление.


Схематичное строение вакуумной системы для забора венозной крови

Точно рассчитанное на этапе производства давление обеспечивает оптимальное соотношение количества крови к реагенту.

Преимущества использования систем с отрицательным давлением

Все достоинства систем с отрицательным давлением связаны с их конструкцией. Их использование позволяет:

  • полностью исключить контакт медицинского персонала во время забора материала с кровью пациента;
  • стандартизировать процесс забора крови и подготовки проб, создать простой алгоритм действий;
  • снизить количество операций, затраченных на подготовку образца к исследованию в лаборатории;
  • первичные пробирки, включенные в состав систем с отрицательным давлением, могут использоваться напрямую во многих автоматических анализаторах. Это экономит средства на приобретении вторичных пластиковых пробирок и время на перенос в них образцов;
  • сделать транспортировку и центрифугирование биоматералов более безопасными, так как пробирки герметичны, изготовлены из небьющихся материалов;
  • облегчить идентификацию и маркировку проб по видам исследований, благодаря цветной кодировке крышек систем с отрицательным давлением;
  • сократить материальные затраты лаборатории на покупку и обработку дополнительных вторичных пробирок;
  • упростить методику обучения персонала;
  • снизить профессиональный риск инфицирования;
  • уменьшить время, затраченное на взятие венозной крови способом, рассматриваемым в статье.


Разноцветные, изготовленные из высокопрочных современных материалов пробирки обеспечивают безопасность работы медперсонала с кровью

Последовательность получения венозной крови с помощью вакуумных систем

Процесс забора венозной крови состоит из трех стадий:

  • подготовка к процедуре;
  • выполнение забора;
  • окончание взятия материала.

На стадии подготовки в процедуре взятия биоматериала из вены медицинскому персоналу необходимо:

  1. Обработать руки, пользуясь схемой, предусмотренной ВОЗ.
  2. При работе с кровью каждый человек рассматривается как потенциальный носитель гемоконтактной инфекции. Поэтому перед началом процедуры забора крови необходимо переодеться в защитную одежду.
  3. Оформить в регистрационном журнале направление на анализ крови. Это нужно для маркировки инструментов и заполнения документов, имеющих отношение к одному человеку. В направлении указываются паспортные данные пациента, дата и время взятия крови, регистрационные данные анализа в лаборатории, данные врача, назначившего анализ.
  4. Сравнить информацию в направлении с данными конкретного пациента.
  5. Проверить, дал ли пациент информированное согласие на проведение процедуры, подробно разъяснить ему цель и последовательность ее выполнения.
  6. Уточнить соблюдение больным правил ограничений в еде, принятых перед сдачей анализов.
  7. Удобно устроить пациента.
  8. Подготовить рабочее место: расположить все приспособления, необходимые для взятия крови, предварительно убедившись в целостности и пригодности к использованию (сохранность печатей стерильности, срок годности и т.п.). Выбрать пробирки с нужной цветовой маркировкой необходимого объема. Взять иглу подходящего размера.
  9. Надеть маску, защитные очки, резиновые перчатки.


Правильное расположение пациента – один из немаловажных принципов верной процедуры забора крови

После выполнения всех действий первого этапа можно переходить к забору крови.

Алгоритм забора биоматериала вакуумной системой

Второй этап процедуры выполняется пошагово:


Правильное расположение иглы при проведении забора венозной крови

  1. Осмотреть предполагаемые места венепункции, выбрать точку для проведения процедуры, пропальпировать вену. Чаще всего используют локтевые вены, но при необходимости кровь можно брать из вен запястья, тыльной стороны кисти, над большим пальцем руки и т.д.
  2. Зафиксировать жгут на 10 сантиметров выше места венепункции. При наложении жгута женщинам нельзя использовать руку на стороне мастэктомии. Длительное сдавливание тканей и сосудов (более двух минут) может привести к сдвигам в показателях коагулограммы и концентрации некоторых веществ.
  3. Взять иглу и снять с нее защитный колпачок.
  4. Соединить иглу с держателем.
  5. Попросить больного сжать ладонь в кулак. Нельзя делать резкие движения, это может привести к сдвигам в показателях крови. Если вена видна плохо, можно приложить к руке теплую салфетку, или помассировать руку от кисти к локтю. При отсутствии пригодных к венепункции сосудов на одной руке надо проверить другую.
  6. Обработать место пункции дезинфицирующим средством круговыми движениями от центра к краю.
  7. Дождаться, когда антисептик испарится, или убрать его излишки стерильной сухой салфеткой.
  8. Снять с вакуумной системы защитный цветной колпачок.
  9. Зафиксировать вену, обхватив предплечье. Большой палец расположить на 3˗5 сантиметров ниже места укола. Натянуть кожу.
  10. Под углом 15° ввести иглу с держателем в вену. При правильном введении в индикаторной камере держателя появится кровь.
  11. Зафиксировать пробирку в держателе крышкой вверх. Под действием отрицательного давления кровь начнет течь в пробирку.
  12. Как только в пробирку стала набираться кровь, ослабить жгут или снять.
  13. Сказать пациенту, чтобы он расслабил руку и разжал кулак.
  14. Когда поступление крови в пробирку прекратится, вынуть ее из держателя.
  15. Перемешать биоматериал с консервантом. Не встряхивать! Пробирку можно только плавно переворачивать.
  16. В том случае, если у пациента берут несколько проб, держатель с иглой оставляют в вене и повторяют последовательно действия пунктов 11-15.


Вакуумная система для забора позволяет набрать несколько пробирок материала, не извлекая иглу

После выполнения всех вышеперечисленных действий можно приступать к заключительной стадии забора крови.

Стадия окончания процедуры
На заключительном этапе взятия биоматериала из вены медицинскому персоналу необходимо:

  1. Закрыть место венепункции сухой стерильной салфеткой.
  2. Вынуть иглу из вены, закрыть защитным колпачком, поместить в емкость для отходов.
  3. Наложить фиксирующую повязку.
  4. Спросить пациента о самочувствии. Оказать помощь при необходимости.
  5. Провести маркировку проб, подписать каждую пробирку.
  6. Поместить пробы в контейнеры для транспортировки и отправить в лабораторию.

Возможные ошибки при использовании вакуумных систем

При использовании для взятия венозной крови вакуумных систем возможно столкнуться со следующими проблемами.

Кровь не поступает в пробирку после ее соединения с держателем. Причин может быть несколько:

  • игла не попала в вену. В этом случае, не вынимая полностью иглу из-под кожи, надо изменить ее положение;
  • кончик иглы уперся в стенку вены. Надо осторожно скорректировать положение иглы;
  • вена проткнута насквозь. Тоже необходимо скорректировать положение иглы.

Во всех перечисленных случаях можно не отсоединять пробирку от держателя, если не нужно вынуть иглу из˗под кожи.

В пробирку поступила кровь в меньшем количестве, чем необходимо. Причины этого: вена спалась из˗за низкого давления, в пробирку попал воздух. В первом случае надо отсоединить пробирку от держателя и выждать некоторое время, за которое вена опять наполнится. Во втором – систему надо заменить и выполнить всю процедуру сначала.

Соблюдение последовательности действий алгоритма взятия биоматериала вакуумными системами позволяет повысить качество лабораторных анализов и оптимизировать работу персонала.